Исследования в консервации культурного наследия. Выпуск 2

Фирсова О. Л.

Защита экспонатов от агрессивного влияния биологических агентов должна предусматривать меры не только по уничтожению вредителей, но по предотвращению контакта с ними музейных предметов. Важную роль в профилактике биоповреждений играет грамотное содержание здания музея. Это предполагает меры против нарушения гидроизоляции, в результате чего в помещениях возникают зоны повышенной влажности. Образование таких зон провоцирует развитие колоний микроскопических грибов и размножение влаголюбивых насекомых. Для предотвращения биопоражений требуется и правильная организация помещения для хранения коллекций. В хранилище должно быть выделено несколько функциональных зон: собственно хранилище; рабочее место хранителя; место для работы посетителей и изолятор. Окна, двери и вентиляционные отверстия в помещении хранилища должны быть защищены сетками, чтобы предотвратить проникновение внутрь насекомых. Оборудование для фондохранилища необходимо подбирать с учетом особенностей коллекции, но оно в любом случае должно быть изготовлено из материалов, которые не могут служить питательной средой для инсектов, а его конструкция должна обеспечивать возможность проведения регулярных профилактических осмотров предметов [3]. Для поддержания в помещении хранилища нормального санитарного режима недостаточно

обычной влажной уборки – она должна проводиться с применением обеззараживающих средств. Для этой цели можно использовать препараты бытовой химии, предназначенные для уборки жилых помещений. Важно, чтобы и хранители и исследователи, работающие в фондах, не посещали хранилища в уличной обуви и одежде, т. к. с ними могут быть занесены споры микроскопических грибов и даже насекомые или их личинки. Целесообразно перед входом в каждое музейное хранилище разместить коврики для вытирания обуви, пропитанные раствором обеззараживающего средства. Совершенно необходимо, чтобы все новые поступления и предметы, возвращающиеся после экспонирования, до их размещения на постоянные места хранения помещались в изолятор, проходили тщательный осмотр и фумигацию или обработку в морозильной камере. Подавляющее большинство предметов, поступающих в музей, имеют бытовые загрязнения и нуждаются в очистке с последующей обработкой, даже если видимых очагов заражения при первичном осмотре не выявлено.

Все вышеперечисленные меры позволят существенно снизить риск заноса в хранилище насекомых и их личинок, а также снизить уровень загрязнения воздуха спорами микроскопических грибов.

Важным фактором профилактики биологических повреждений экспонатов является создание благоприятных климатических условий, позволяющих снизить опасность возникновения очагов грибной контаминации или заражения инсектами. Установлено, что скорость процесса заражения экспонатов микроскопическими грибами зависит от степени влагонасыщения материалов. Таким образом, предметы, изготовленные из материалов, особенно склонных к влагопоглощению (дерево, бумага, ткань), наиболее уязвимы в условиях повышенной влажности воздуха в помещении [2].

Различные материалы нуждаются в различных климатических условиях для их хранения, но на практике большинство музейных предметов представляют собой сочетание различных материалов, поэтому и температурно-влажностный режим надо подбирать, учитывая условия комплексного хранения. Для контроля показателей температуры и относительной влажности в хранилищах и экспозиционных залах целесообразно использовать термогигрометры-логгеры (электронные накопители данных), которые осуществляют непрерывную запись показателей температуры, относительной влажности с заданным интервалом. Данные затем считываются специальной компьютерной программой и могут быть представлены как в виде цифровых показателей, так и в виде графика или диаграммы. (В самых совершенных системах термогигрометры-логгеры могут иметь несколько выносных датчиков и передавать данные непосредственно на компьютер в режиме онлайн.) С помощью таких приборов можно получить наиболее объективную картину колебаний температуры и относительной влажности в помещениях музея, выявить колебания температуры и относительной влажности в течение суток, отметить изменения показаний температурно-влажностного режима в периоды, когда в залах музея много посетителей, зафиксировать разницу показателей температуры и относительной влажности в экспозиционном зале и в витрине. На основе анализа полученных данных можно разрабатывать мероприятия по оптимизации температурно-влажностного режима.

Немаловажную роль в предупреждении биоповреждений музейных предметов играют регулярные профилактические осмотры экспонатов, их обеспыливание и обработка репеллентами. Необходимо помнить, что предметы, долгое время находящиеся в покое, быстрее поражаются насекомыми, чем те, которые регулярно осматривают, проветривают и чистят. Поверхностные загрязнения являются источником питания для грибов, помимо этого пыль обладает большой гигроскопичностью, что способствует увлажнению материалов и создает условия для развития плесени [1]. Для своевременного обнаружения очагов заражения рекомендуется проводить осмотры не реже одного раза в месяц. Для хранителей коллекций и выставок профилактические осмотры должны быть постоянной плановой работой.

В настоящее время существует широкий диапазон средств уничтожения насекомых и плесени в тех случаях, когда заражение музейных предметов все-таки произошло. Вместе с тем, опыт применения существующих средств и методов борьбы с биопоражениями принес как положительные, так и отрицательные результаты. Самыми распространенными методами борьбы с поражениями экспонатов инсектами сегодня являются метод фумигации и метод вымораживания. Для фумигации применяется эффективно уничтожающий насекомых и их личинки газ – этот метод позволяет уничтожить насекомых во всех фазах развития. Но основным недостатком данного метода является высокая токсичность таких газов для людей. Кроме того, недостаточно изучено повреждающее воздействие фумигантов на музейные предметы, включающие самые разнообразные материалы и вещества [3]. Метод вымораживания намного экологичнее и выгодно отличается от фумигации отсутствием химикатов, сорбируемых материалом. Для обработки экспонатов низкими температурами их помещают в морозильную камеру. Как показывает опыт использования морозильных установок в музеях нашей страны и за рубежом, применяемая технология обработки различна. Например, в двух крупнейших музеях России – Эрмитаже и Кунсткамере – экспонаты загружают в морозильную камеру при температуре –3^oC. Далее в течение нескольких часов в камере достигается температура обработки, которая составляет 18–22^oC ниже нуля. Спустя 7 суток предметы вынимаются из морозильной установки (при этой же температуре). Другая методика вымораживания зараженных насекомыми музейных предметов используется в этнографическом музее в г. Штутгарт (Германия). Там рабочая температура в камере создается до загрузки в нее предметов, экспонаты помещаются в камеру, когда температура в ней 35^oC ниже нуля, время выдержки предметов в камере составляет 2–3 суток. Затем в течение нескольких часов температура в камере повышается до комнатной, после чего экспонаты вынимают из камеры. Сразу же после обработки проводится повторный цикл. Мне представляется, что методика, которая используется в этнографическом музее г. Штутгарт, более эффективна, т. к. зараженные предметы сразу попадают в условия низкой температуры и

биологические агенты подвергаются температурному шоку, что исключает возможность их адаптации к низкой температуре. Кроме того, температура обработки ниже той, что используется в Эрмитаже и Кунсткамере, а хладостойкость насекомых зависит от их вида и фазы развития, в силу этого вымораживание при более низкой температуре эффективнее. Вымораживание не имеет пролонгирующего действия. Остается открытым вопрос о том, сколько раз можно подвергать обработке низкими температурами различные материалы без ущерба их физической сохранности. Известно, что резкие колебания температуры и относительной влажности пагубно влияют на состояние сохранности музейных предметов, а при обработке в морозильной камере материалы, из которых сделаны экспонаты, подвергаются температурному шоку.

Второй вид часто встречающихся биопоражений экспонатов – поражение микроскопическими грибами. С 2002 г. в Российском этнографическом музее совместно с сотрудниками Научно-исследовательского технологического института антибиотиков и ферментов медицинского назначения (НИТИАФ) проводятся исследования по подбору оптимальных средств обеззараживания экспонатов от грибковой микрофлоры. Ранее для обеззараживания зараженных предметов использовали препарат лизоформин: жидкий концентрат с действующими веществами дидецилдиметиламмоний хлорид (9,8 %) и производное гуанидина (2,9 %). Обработку проводили водно-спиртовым раствором лизоформина в 4 %-ной концентрации. Спустя 3–5 месяцев после 3-кратной обработки лизоформином пробы на наличие грибковой микрофлоры показали наличие грибов на всех обработанных предметах, хотя после обработки рост их замедлился. Таким образом, метод оказался не очень эффективным и вместе с тем достаточно трудоемким, что побудило специалистов музея к поискам других способов обработки.

В НИТИАФ предложили использовать для обработки микродозы противогрибковых антибиотических препаратов. На первом этапе работ были отобраны пробы микрофлоры с нескольких музейных предметов, изготовленных из различных материалов (керамика, дерево, кожа, ткань, металл), а также взяты пробы со стен хранилищ. Выделены были микроскопические грибы, которые относились в основном к нескольким родам (Penicillium, Aspergillius, Trichoderma, Cladosporium).

Для продолжения работ использовались образцы, имитирующие музейные экспонаты. Они были простерилизованы, из них некоторые оставлены как контрольные, а остальные – заражены выделенной микрофлорой.

Из группы зараженных образцов еще часть отобрали в качестве контрольных, остальные обрабатывались раствором противогрибковых препаратов. Зараженные модельные образцы были обработаны несколькими антибиотическими препаратами: амфотерицином, леворином, гризеофульвином и нистатином. Наибольшая активность оказалась у нистатина, и дальнейшие опыты проводились именно с этим антибиотиком. После проведения ряда опытов была подобрана оптимальная концентрация нистатина в растворе (система растворителей: диметилсульфоксид, этиловый спирт, дистиллированная вода), при которой происходила гибель грибковой микрофлоры во всех вариантах опыта на всех типах материалов. После удаления грибов с поверхности модельных образцов были проведены дополнительные исследования на выявление бактериальной микрофлоры. Пробы показали наличие грамположительных микроорганизмов. Была проведена серия опытов с тетрациклином, окситетрациклином, ампициллином, олеан-домицином, рифампицином, как наиболее эффективный отобран окситетрациклин. Дальнейшая обработка зараженных микроскопическими грибами предметов проводилась комбинированным препаратом, состоящим из раствора нистатина и раствора окситетрациклина. В результате микрофлора была уничтожена на 98 % [5, 6]. После того как были получены положительные результаты в опытах с модельными образцами, дальнейшие работы проводились с музейными экспонатами, которые хранились в неудовлетворительных условиях в подвальных помещениях главного корпуса музея и подверглись заражению. После однократной обработки экспонаты коллекции переместили в новое хранилище, где температурно-влажностный режим соответствует нормам. Контроль за состоянием экспонатов после обработки осуществляется одновременно специалистами РЭМ, сотрудниками ОАО «Аптека-сервис» (ранее лаборатория НИТИАФ), микробиологами Санкт-Петербургского Государственного медицинского Университета им. академика И.П.Павлова. Результаты контрольных обследований подтверждают отсутствие роста плесневых грибов на обработанных экспонатах при хранении их в благоприятных климатических условиях. Кроме того, наблюдения за состоянием обработанных предметов в течение длительного времени (первая группа предметов была обработана в 2004 году) показывают, что обработка раствором нистатина не приводит к изменению внешнего вида предметов или изменению каких-либо свойств материалов, из которых предметы изготовлены. Вместе с тем важно отметить, что обработке не подвергались документы или экспонаты из бумаги, т. к. ранее было установлено, что нистатин вызывает пожелтение бумаги. Проведенные исследования позволяют утверждать, что описанная методика не уступает по эффективности ни одной из ранее известных, предполагает уничтожение микрофлоры с 98 %-й вероятностью при однократной обработке, а вещества, используемые в данной разработке, безопасны для здоровья людей.

Подводя итог, еще раз хочу отметить, что важнейшим способом защиты от биоповреждений музейных предметов является комплексная профилактика, а все существующие меры обработки экспонатов, зараженных биологическими агентами, не являются панацеей и должны применяться строго дифференцированно и только специалистами.

Литература

1. Безбородова Л. Ф., Полякова Ж. В. Защита материалов, используемых в реставрации произведений искусства, книг и архивных документов от биоповреждений. Насекомые и грызуны-разрушители материалов и технических устройств [Текст] / Л. Ф. Безбородова, Ж.В.Полякова. [Отв. редактор Наумов Н. П.]. – М., 1983.

2. Богомолова Е. В., Зароченцева И. А., Кобякова В. И., Панина Л. К., Первак В. Э., Погребникова И. Л. Роль сезонных колебаний влажности в музейных помещениях старинных зданий Санкт-Петербурга в возникновении грибных повреждений экспонатов. Успехи медицинской микологии [Текст] / Е. В. Богомолова и др. // Материалы четвертого всероссийского конгресса по медицинской микологии. – М., 2006. – Т.VII.

3. Кроллау Е. К., Нацкий К. В. Проблемы защиты музейных ценностей от биологических повреждений (практические задачи). Насекомые и грызуны-разрушители материалов и технических устройств [Текст] / Е. К. Кроллау, К. В. Нацкий [Отв. редактор Наумов Н. П.]. – М., 1983.